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Desde la Agencia Española ISBN se ha concedido el siguiente número ISBN para las comunicaciones técnicas: 
 

978-84-09-46920-8
Recopilación de Publicaciones Científico Técnicas y de Difusión de Proyectos aceptadas en el Marco del Congreso Nacional del Medio Ambiente

(Los contenidos de las comunicaciones técnicas y de los póster son exclusiva responsabilidad de sus autores)


Cultivo de microalgas para la biorremediación de aguas residuales marinas

Autor: Francisco Jesús Rey Losada
Profesor
UVIGO - Universidad de Vigo
Otros autores: Estrella Álvarez Da Costa; Ángel Manuel Sánchez Bermúdez; Paola Rey-Dubra Universidade de Vigo
Formato: Comunicación técnica escrita
Tipo: Difusión de Proyecto
Temática: Residuos
ODS relacionados: Igualdad de género, Acción por el clima, Vida submarina
Documentos asociados: Doc. Escrito
Resumen:
Las aguas residuales marinas contienen materia orgánica e inorgánica que pueden causar daños medioambientales. Se han estudiado diferentes métodos de purificación para remover este tipo de contaminantes de los vertidos marinos. Uno de ellos es la fitoremediación. En este trabajo se presentan los métodos experimentales y los resultados de la determinación de los valores de potasio y materia orgánica, entre otros, durante el período de cultivo de un tipo del microalga marina "Nannochloropsis gaditana", que se encuentra de forma natural en la Ría de Vigo. Durante el período de cultivo, se midieron varios parámetros fisicoquímicos como temperatura del agua, pH, DQO, concentración de fósforo disuelto, así como la densidad de microalgas y el peso (materia seca) de las mismas. En estas condiciones, se demuestra que el cultivo de las microalgas puede reducir el contenido en fósforo del agua residual en un 90% en 10 días de cultivo, mientas que la DQO cae un 70% en el mismo período. Además, este tipo de de microalgas se puede emplear como nutriente para animales o personas o la síntesis de biocombustibles.

Objetivos:
Microalgae are an important raw material in promising biotechnological applications to reduce the environmental impact of industrial pollution. (Havlik et al., 2013). Monitoring the growth of microalgae in cultures is a key parameter for algal biomass production control, mainly at industrial scale. Methods to estimate biomass concentration are varied, with advantages and disadvantages depending on the technique (offline and online), but are not easy for small volume systems containing few cells (Chioccioli et al., 2014), and for microscopic cell counting, due to excessive time consuming and skills of the operator which performs the count.

This paper describes the use of a mobile phone camera with RGB data decomposition to evaluate the number of microalgae in a water culture by image processing of pictures taken at different concentrations during microalgae growth. In short the objective will be check if can result an useful techniques to apply for monitoring concentration parameters.

Acciones:
Experimental procedure was described Salgueiro et al., 2022. A very good result was obtained for fitting the microalgae mass per volume of culture (dry cell weight mg/L) to the spectrophotometer measured absorbance (R2 0,9903 which means that absorbance measurements are useful to follow the growth. Also the decomposition of the images into reds and greens is well correlated with the data collected in the count., with the image decomposition decreasing over concentration (correlation coefficients >0,99). Other authors have obtained similar results with other microalgae cultures (Wood et al., 2020). According to this results, the equation that relations microalgae dry biomass per volume in a Nannochloropsis Gaditana culture with the image decomposition of an image taken with a mobile phone camera is mg/L = mR + mG + mB + m0

Resultados:
The present study demonstrates what following growth of a Nannochoropsis Gaditana culture in sea water photobioreactor, a simple analysis of pictures periodically taken with a mobile phone is enough accurate as the absorbance measures made with a laboratory spectrophotometer. According to the results of this experiment it promises to be a very innovative and stunning technique, but it must keep in mind that we need to perform previous calibrations for each microalgae, culture media, light conditions and type of culture apparatus (photobioreactor, raceway, etc.).

Chioccioli M, Hankamer B, Ross IL (2014). PLoS One 9:1–12

Havlik I, Lindner P, Scheper T, Reardon KF (2013). Trends Biotechnol. 31:406–414

Salgueiro, J.L., Perez, L. Sanchez, A., Cancela, A., Miguez, C. (2022) J. Appl. Phycology, 34:871-881

Wood NJ, Baker A, Quinnell RJ, Camargo-Valero MA (2020). Front Bioeng. Biotechnol. 8:746